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GST融合蛋白纯化试剂盒图片
产品货号:
BTN111116
中文名称:
GST融合蛋白纯化试剂盒
英文名称:
GST-tag Protein Purification Kit
产品规格:
20T
发货周期:
1~3天
产品价格:
询价

本试剂盒利用GST标记的蛋白能与谷胱甘肽层析介质结合,并能被还原型谷胱甘肽洗脱的特点而建立,是目前分离纯化GST标记蛋白质的重要方法。




  • 一站式套装,含所需的谷胱甘肽介质、溶液和层析柱,用户只需要提供表达GST标记蛋白的细菌(酵母、杆状病毒、培养细胞)即可,非常方便。
  • 专一性强,一次过柱即可获得纯度高达95%的GST-标记蛋白。
  • 只能在非变性条件下使用,只可用于纯化没形成包涵体的GST标记蛋白。
  • 每次可以处理20mL的表达菌液,适合初步筛选和鉴定。
  • 提供4mL浓度为50%的谷胱甘肽-Agarose介质,可吸附5~10mg GST标记蛋白质。
  • 本介质可以反复使用多次。



组分规格保存
6mL层析柱(带筛板)1套常温
10×PBS缓冲液100mL
GST标签蛋白纯化溶液A1mL
GST洗脱缓冲液成分一25mL
GST洗脱缓冲液成分二80mg2~8℃
溶菌酶(20kU/mg)30mg
谷胱甘肽-琼脂糖介质(50%)4mL
Benzonase(1U/μL)100μL-20℃
PMSF(10mg/mL)1mL

保存:按标签指示条件保存,有效期一年。


一、重组蛋白的表达和细菌收集
  1. 37℃振荡培养20mL含表达质粒的细菌到OD600=0.6~0.8。
  2. 加IPTG到终浓度为0.1mM,30℃振荡培养3小时或22℃振荡培养8小时(或过夜)。
  3. 4℃ 5000×g离心10分钟收集20mL表达菌液,弃上清。
  4. 用1×PBS缓冲液重悬细菌沉淀,4℃ 5000g离心10分钟,弃上清。沉淀可直接用于裂解或放-80℃保存。
    • 1×PBS缓冲液可用自备的超纯水稀释本试剂盒提供的10×PBS缓冲液而得。
    • PBS缓冲液极其容易长细菌,注意防止污染。


二、细胞裂解
  1. 如果用超声波破碎细胞,先用1mL冰浴的新鲜配制的细胞裂解液重悬细菌沉淀。冰上超声裂解重悬菌体直到在显微镜下看见绝大多数细胞破裂。
    • 细胞裂解液的配制方法:在1mL 1×PBS缓冲液中加入50μL溶液A和50μL 10mg/mL的PMSF溶液,混匀即可。
    • 超声参数需根据仪器型号自行摸索,一般选1K-10K频率处理15次,每次20秒,间隔1分钟(必需放置在冰上)。
    • 裂解物不能粘稠,否则会堵塞层析柱。
  2. 如果用酶法破裂细胞,则在1mL冰浴的、新鲜配制的细胞裂解液重悬细菌。将重悬细菌冰上放置30分钟,得到细菌裂解物。
    • 细胞裂解液配制方法:在1mL 1×PBS缓冲液中加入1.5mg溶菌酶干粉、50μL 10mg/mL的PMSF溶液和5μL Benzonase溶液,混匀即可。
  3. 将超声或酶法得到的细胞裂解物在13000×g 4℃离心10分钟去除未裂解细胞和裂解细胞碎片以防堵柱,所得上清即含可溶性GST标记蛋白。预留少量(如100μL)作为裂解液留样,其余用于第10步的过柱。


三、层析柱的制备和GST蛋白纯化
  1. 摇晃将4mL谷胱甘肽-琼脂糖介质充分混匀后,全部加入到预放了一片筛板的层析柱中。
    • 介质的最低用量需要根据GST蛋白产量决定,100mL菌液最少需要使用200μL介质。此处加2mL则绰绰有余。
    • 下列步骤各溶液的用量均针对4mL介质而定,如果介质用量不同,各溶液用量需相应调整。
  2. 用40mL预冷的1×PBS缓冲液洗柱。
  3. 将第7步得到的上清液(含可溶性GST标记蛋白)上柱,让重力使上柱液自然流出,收集并保存穿透液用于SDS-PAGE电泳。
    • GST和谷胱甘肽之间的结合很缓慢,所以流速一定不能快,否则结合不充分。流速一般在0.2~1mL/分钟即可。
    • 如要提高GST标记蛋白与介质的结合效率,可用本试剂盒提供的红盖将层析柱下的漏液口堵上,让细菌裂解液和介质在4℃结合30分钟或过夜。也可以将穿透液反复上柱。
  4. 用10mL 1×PBS缓冲液洗柱,收集并保存穿透液(含杂蛋白)并预留100μL作为穿透液留样,其余在确认实验成功后再丢弃。
  5. 用0.2~0.5mL GST洗脱液洗柱,收集并保存穿透液,此穿透液即纯化的GST标记蛋白样品。
    • GST洗脱液的配制方法:将约80mg GST洗脱液成分二干粉全部加入到GST洗脱液成分一溶液中,摇晃直到干粉全部溶解即得GST洗脱液,分装成小份放-20℃保存,每次用一管。
    • 由于可能含蛋白酶污染,所以纯化样品不能在4℃长期放置,需留100μL左右用于后续浓度测定或/和SDS-PAGE电泳,其余放-80℃长期放置。
  6. 用裂解液留样(第7步)、穿透液留样(第11步)和纯化样品留样(第12步)进行蛋白定量或/和SDS-PAGE分析。
    • 本操作没有预先脱盐,故只能用Bradford法或OD检测法测定裂解液留样、穿透液留样和样品留样的蛋白浓度。
    • 按OD检测法,1 OD280约等于0.5mg/mL蛋白。由于GST的分子量为26kD,所以在SDS-PAGE胶上,GST标记蛋白将比天然蛋白大26kD。


四、GST柱的恢复(本试剂盒不含所需试剂)
  1. 用3倍介质体积的6M盐酸胍处理柱子10分钟。介质为2mL则用6mL,下同。
  2. 用3倍介质体积的超纯水处理柱子10分钟。
  3. 用3倍介质体积的缓冲液一(0.5M NaCl,0.1M Tris-HCl,pH8.5)处理柱子10分钟;用3倍介质体积的缓冲液二(0.5M NaCl,0.1M Tris-HCl,pH4.5)处理柱子10分钟。此步骤重复两次。
  4. 用3倍介质体积的超纯水处理柱子3次。
  5. 若需要立即使用,则用3倍介质体积的1×PBS缓冲液处理柱子2次。堵上漏口,加3倍介质体积的1×PBS缓冲液洗涤后立即使用。
  6. 若长时间不用,则上步的1×PBS改成20%的乙醇,其余操作完全相同。



  • 为何GST蛋白不与介质结合或结合很弱?
    可能原因及解决办法:标签蛋白变性(使用温和裂解方法)、标签蛋白聚集(补加DTT)、标记蛋白浓度太低(浓缩样品)、标记蛋白改变了GST的构型(降低结合时的温度)、结合时间太短(延长蛋白与吸附柱的结合时间)。

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